声明

本文是学习GB-T 34757-2017 猪流行性腹泻 病毒RT-PCR检测方法. 而整理的学习笔记,分享出来希望更多人受益,如果存在侵权请及时联系我们

1 范围

本标准规定了猪流行性腹泻病毒RT-PCR
检测方法的仪器、试剂、样品的采集和处理、RT-PCR 程

序、电泳及结果判定的技术要求。

本标准适用于快速检测猪临床样品(猪小肠和新鲜粪便)或细胞培养物中猪流行性腹泻病毒核酸。

2 规范性引用文件

下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注明日期的引用文件,仅注日期的版本适用于本

文件。凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。

GB/T 6682 分析实验室用水规格和试验方法

3 缩略语

下列缩略语适用于本文件。

AMV: 鸟类 RNA 病毒反转录酶(avian myeloblastosis virus)

bp:碱基对(base pair)

DEPC: 焦碳酸二乙酯(diethylpyrocarbonate)

DNA: 脱氧核糖核酸(deoxyribonucleic acid)

dNTPs:4 种脱氧核糖核苷三磷酸混合物(deoxyribonucleoside triphosphates)

PBS:磷酸盐缓冲液(phosphate-buffered saline buffer)

RNA: 核糖核酸(ribonucleic acid)

RT-PCR: 反转录-聚合酶链式反应(reverse transcriptase-polymerase chain
reaction)

RRI:RNA 酶抑制剂(rnase ribonuclease inhibitor)

Taq 酶:Taq DNA 聚合酶(Taq DNA polymerase)

4 仪器

4.1 PCR 扩增仪。

4.2 高速台式冷冻离心机:可控温至4℃、离心速度可达12000 r/min 以上。

4.3 组织研磨器或者研钵。

4.4 冰箱2℃~8℃冰箱和— 70℃以下超低温冰箱。

4.5 核酸电泳仪和水平电泳槽。

4.6 微量移液器 量程分别0.2μL~2μL、1μL~10μL、10μL~100μL、20μL~200μL
和100μL~ 1000μL 的移液器,并配备与移液器相匹配的吸头。

4.7 高压灭菌锅。

4.8 凝胶成像系统(或紫外透射仪)。

GB/T 34757—2017

5 耗材

5.1 1.5 mL 无 RNA 酶离心管。

5.2 0.2 mL PCR管。

6 试 剂

除非另有说明,在检测中使用的试剂均为分析纯。提取病毒 RNA
所用试剂应使用无 RNA 酶的容

器进行分装。

6.1 水 ,GB/T 6682,三级水。

6.2 病毒裂解液:商品化 RNA 提取试剂盒,4℃~8℃保存。

6.3 氯仿:常温保存。

6.4 异丙醇:使用前预冷至-20℃。

6.5 无水乙醇: -20 ℃预冷。

6.6 75%乙醇:无水乙醇和双蒸水配制, -20℃预冷。

6.7 AMV 逆转录酶及5倍逆转录酶反应缓冲液: 一20℃保存,避免反复冻融。

6.8 DEPC 水:购买商品化 DEPC 水。

6.9 Taq 酶及10倍 Taq 酶反应缓冲液: -20 ℃保存,避免反复冻融。

6.10 RRI:-20℃ 保存,避免反复冻融。

6.11 dNTPs: 含 dATP、dGTP、dCTP、dTTP 各10 mmol/L,-20℃
保存,避免反复冻融。

6.12 DNA 分子量标准:DL2000bp DNA ladder。

6.13 磷酸盐缓冲液(PBS): 配制见 A.1。

6.14 电泳缓冲液(TAE): 配方及配制方法见 A.2。

6.15 样品处理液:配方及配制见 A.3。

6.16 1%琼脂糖凝胶板:配制见 A.4。

6.17 引物:见附录 B。

6.18 猪流行性腹泻病毒阳性样品及阴性样品:阳性样品的制备参见 C.1,
阴性样品的制备参见 C.2。
阳性样品和阴性样品可由标准编制单位或国家指定实验室提供。

7 样品采集和处理

7.1 采样工具

7.1.1 手术刀、剪刀、镊子,经160℃干热灭菌2 h。

7.1.2 注射器。

7.1.3 一 次性无菌采样拭子。

7.1.4 组织研磨器或者研钵,经160℃干热灭菌2 h。

7.2 样品采集

宜采集腹泻急性期的小肠(5.0 cm~10.0 cm)或新鲜粪便(5.0 g~10.0
g),放到密封袋中。

7.3 样品运输

将含有样品的密封袋置于带有冰袋的样品运输箱中,送至实验室。样品的运送应在低温保存条件

GB/T 34757—2017

下进行,样品被运到实验室时,所附带的冰袋应没有完全融化。

7.4 样品保存

7.4.1 采样点保存

样品不能被及时送到实验室时,应置于-20℃冰箱中保存,保存期应不超过1个月;如需长期保存

样品,应置于-70℃冰箱。

7.4.2 实验室保存

7.2中采集的样品可立即用于检测。不能立即检测的样品,在2℃~8℃下保存应不超过24
h,

-20℃±5℃下应不超过1个月, -70℃以下可长期保存。

7.5 样品处理

7.5.1 小肠样品的处理

取5.0 cm~10.0 cm 小肠组织,用剪刀剪碎,加入5.0 mL~10.0 mL 的 PBS,
用组织研磨器或研钵 研磨后转移到小玻璃瓶中,
一20℃反复冻融3次后摇匀,取1.0 mL 小肠组织液到1.5 mL 离心管中,经

12000 r/min 离心5 min,取500μL 上清备用。

7.5.2 粪便样品的处理

取0.5g~1.0g 新鲜粪便,加入到含5.0 mL~10.0mL 样品处理液(配方见 A.3)
的玻璃瓶中,

-20℃反复冻融3次后摇匀,取1.0 mL 处理过的粪便样品到1.5 mL
离心管中,经12000 r/min 离心

5 min,取500μL 上清备用。

8 RT-PCR 操作程序

8.1 RNA 的提取

选择市售商品化 RNA 提取试剂盒,按照试剂盒操作说明书提取样品中的RNA。
在提取RNA 时,

应设立阳性和阴性对照样品,按同样的方法提取 RNA。RNA
提取操作应在通风柜或生物安全柜中进

行,避免RNA 气溶胶的污染。

8.2 反转录(RT)

8.2.1 反转录引物序列 下游引物 P2,见附录B。

8.2.2 RT 反应体系 反转录的反应体系参见附录D。

8.2.3 RT 反应程序 42℃水浴1 h,70℃ 灭活15 min, 结束反应。可以直接进行
PCR, 或者放于 -20℃保存备用。试验中设阳性和阴性对照。

8.3 聚合酶链式反应(PCR)

8.3.1 PCR 引物序列 见附录B。

8.3.2 PCR 反应体系 参见附录 D。

8.3.3 PCR 反应程序 95℃预变性5 min 后进入PCR 循环,94℃变性30s,52.5℃
退火30 s,72℃ 延 伸30 s,30 个循环,最后72℃终延伸10 min,
结束反应。同时设空白对照。1%琼脂糖电泳分析结果。

GB/T 34757—2017

9 电泳

9.1 制备1.0%琼脂糖凝胶板,见附录 A。

9.2 取10.0μLPCR 产物与2.0μL 市售的 DNA
上样缓冲液(6×)混合,加入到琼脂糖凝胶板的加样 孔中,同时加入 DNA
分子量标准作对照。

9.3 盖好电泳仪,插好电极,电压为5 V/cm~10V/cm, 时间为30 min。

9.4 用紫外凝胶成像系统对图片拍照、存档。

9.5 用分子量标准比较判断 PCR 片段大小。

10 结果判定

10.1 试验成立的条件

阳性对照有315 bp 的扩增条带,阴性对照没有相应条带,否则试验不成立。

10.2 样品检测结果

在阳性对照、阴性对照都成立的前提下,若检测样品有315 bp
的条带,则判定该样品猪流行性腹泻 病毒核酸阳性,否则为阴性(参见图
E.1)。 如需要,可对扩增的条带进行回收,克隆到 T 载体,进行测
序,所得序列与附录 E 中的猪流行性腹泻病毒 M
基因的序列进行同源性比较,以进一步确定样品检测

结果。

GB/T 34757—2017

A

(规范性附录)

溶液的配制

A.1 磷酸盐缓冲液(PBS)(0.01 mol/L、pH 7.4)的配制

准确称量下面各试剂,加入到800 mL 蒸馏水中溶解,用盐酸调节溶液的 pH
至7.4,加水至1 L。

分装后在121℃灭菌20 min,或过滤除菌,保存于室温。

磷酸二氢钾(KH₂PO₄) 0.20 g

磷酸氢二钠(Na2HPO₄ · 12H₂O) 2.90 g

氯化钠(NaCl) 8.00 g

氯化钾(KCl) 0.20 g

蒸馏水 加至1000.00 mL

A.2 电泳缓冲液(TAE) 的配制

先配制 TAE(50×) 贮液,使用时再用蒸馏水稀释成1×电泳缓冲液。1 LTAE
的配制(50×):准

确称量242 gTris 碱、57.1mL 的冰乙酸、100 mL0.5 mol/L EDTA(pH
8.0),加入蒸馏水至1 L, 室温

放置备用。

A.3 样品处理液的配制

准确称量下面各试剂,加去离子水定容至200 mL,121℃ 灭菌20 min
后室温放置备用。

氯化钠

氯化钾

磷酸氢二钠

磷酸二氢钾

乙二胺四乙酸二钠

1.60 g

0.04 g

0.29 g

0.05 g

3.72 g

A.4 1% 琼脂糖凝胶板的制备

准确称取1 g 琼脂糖,加入100 mL1×TAE,

的染料,混匀,倒入制胶板中。

在微波炉中加热,使琼脂糖充分溶解,取出,加入适量

GB/T 34757—2017

B

(规范性附录)

检测猪流行性腹泻病毒 RT-PCR 方法的引物序列

检测猪流行性腹泻病毒RT-PCR 方法的引物序列见表 B.1。

B.1 检测猪流行性腹泻病毒 RT-PCR 方法的引物序列

引物名称

引物浓度

引 物序列

上游引物P1

20 pmol/μL

5'-TATGGCTTGCATCACTCTTA-3'

下游引物P2

20 pmol/μL

5'-TTGACTGAACGACCAACACG- 3'

注:扩增片段为M基因保守区,大小为315 bp。

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C

(资料性附录)

猪流行性腹泻病毒阳性样品和阴性样品

C.1 阳性样品制备

取猪流行性腹泻病毒(PEDV), 用100 mL 的 PBS
稀释至1个病毒半数组织细胞感染量(TCID),

向其中加入不含 PEDV 的猪粪便10 g,摇匀,分装,0.5 mL/ 管,备用。

C.2 阴性样品制备

用PBS 按10:1的比例稀释不含 PEDV 的猪粪便,摇匀,分装,0.5 mL/
管,备用。

GB/T 34757—2017

D

(资料性附录)

检测方法的 RT PCR 反应体系

D.1 RT 反应体系

RNA 20 μL

dNTPs(10 mmol/L) 4.0 μL

RNA 酶抑制剂(RRI) 1.0μL

5×反应缓冲液 8.0μL

AMV 反转录酶 2.0 μL

下游引物 P2(见附录 B) 2.0μL

DEPC 水 3.0 μL

总体积 40.0μL

D.2 PCR 反应体系

反转录产物 3.0 μL

Taq DNA 聚合酶反应缓冲液(10×) 2.5 μL

dNTPs(10 mmol/L) 2.0μL

上游引物 P1 (见附录 B) 1.0μL

下游引物 P2(见附录 B) 1.0 μL

Taq DNA 聚合酶 0.5μL

灭菌去离子水 15.0 μL

总体积 25.0μL

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E

(资料性附录)

检测样品电泳例图及核苷酸序列

E.1 检测样品中猪流行性腹泻病毒电泳例图

检测样品中猪流行性腹泻病毒电泳例图见图 E.1。

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说明:

M— DNA 分子量标准DL2000;

1 — 小肠组织样品;

2 — 粪便样品;

3 — 阳性样品对照;

4 - 阴性对照。

E.1 检测样品中猪流行性腹泻病毒电泳图

E.2 猪流行性腹泻病毒 M
基因第249~563位核苷酸序列(参考CV777 株)

TATGGCCTGCATCACTCTTATGCTGCGGATAATGTATTTTGTCAATAGCATTCGGTTGTGG

CGCAGGACACATTCTTGGTGGTCTTTCAACCCTGAAACTGACGCGCTTCTCACTACTTCTG
TGATGGGCCGACAGGTTTGCATTCCAGTGCTTGGAGCACCAACTGGTGTAACGCTAACACT

CCTTAGTGGTACGTTGCTTGTAGAGGGCTATAAGGTTGCTACTGGCGTACAGGTAAGTCA

ATTACCTAATTTCGTCACAGTCGCCAAGGCCACTACAACAATTGTCTACGGACGTGTTGGT

CGTTCAGTCAA(315 bp)

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